Estudio comparativo de la toxicidad del metilmercurio, cadmio (II) y cromo (VI) en cultivos primarios de neuronas y astrocitos de rata

  1. Uroz Martínez, V. 2
  2. Anadón Baselga, María José 2
  3. Capó Martí, Miguel Andrés 1
  1. 1 Departamento de Toxicología Y Farmacología, Facultad de Veterinaria, Universidad Complutense de Madrid
  2. 2 Departamento de Toxicología Y Legislación Sanitaria, Facultad de Medicina, Universidad Complutense de Madrid
Revista:
Revista de toxicología

ISSN: 0212-7113

Año de publicación: 2008

Volumen: 25

Número: 1-3

Páginas: 56-60

Tipo: Artículo

Otras publicaciones en: Revista de toxicología

Resumen

El presente estudio pretende comparar la concentración letal 50 (CL , dosis que causa la muerte del 50% de las células) de 50 metilmercurio, cadmio (II) y cromo (VI) en cultivos primarios de corteza de rata. Se emplearon hemisferios cerebrales de rata para preparar los cultivos primarios. Los cultivos primarios de neuronas fueron realizados a partir de ratas Wistar de 14-16 días de gestación, usando el medio Eagle modificado por Dulbecco. Para los cultivos primarios de astrocitos se emplearon ratas de un día de vida y el medio de cultivo de Waymouth. Se emplearon las tinciones de azul de metileno y azul tripano para cuantificar la muerte neuronal mediante citometría. La CL para neuronas y astrocitos se calculó mediante el 50 método de Reed-Muench. En cultivos de 24 horas, la CL para las 50 -6 -6 neuronas fue de 5 x 10 M para el metilmercurio, 3,7 x 10 M para el -6 cadmio (II) y 5,34 x 10 M para el cromo (VI). En el caso de los -5 astrocitos, las CL en los cultivos de 24 horas fue de 1,46 x 10 M para 50 -5 -5 el metilmercurio, 3,73 x 10 M para el cadmio (II) y 2,46 x 10 M para el cromo (VI). Estos resultados muestran una resistencia diez veces mayor aproximadamente de los astrocitos con respecto a las neuronas para estos tres compuestos

Referencias bibliográficas

  • Aschner M, Mullaney KJ, Fehm M, Wagoner DE Jr, Vitarella D (1994) Astrocytes as potential modulators of mercuric chloride neurotoxicity. Cell Mol Neurobiol 14: 637-652.
  • ATSDR (2000) Toxicological profile for chromium. Department of Health and Human Services, Public Health Service. Atlanta, Georgia: U.S.
  • Barceloux DG (1999) Chromium. J Toxicol Clin Toxicol 37: 173-194.
  • Capo MA, Alonso CE, Sevil MB, Frejo MT (1994) "In vitro" effects of methyl-mercury on the nervous system: a neurotoxicologic study. J Environ Pathol Toxicol Oncol 13: 117-123.
  • Capo MA, Frejo MT, Sevil B (1997) The use of the glial fibrillary acidic protein (GFAP) biomarker as an early detection model of chemically induced cancer. J Environ Pathol Toxicol Oncol 16: 33-39.
  • Capó MA, Palencia M (1998) Sistemática en la preparación de cultivos en células nerviosas. Animales de experimentación. La revista hispanoamericana 13: 18-23.
  • Capó MA, Sevil B, Frejo MT, Anadón-Baselga MJ, Alonso CE (1994) In vitro neuronal changes induced by beta-aminopropionitrile. J Environ Pathol Toxicol Oncol 13: 259-264.
  • Capó MA, Sevil MB, López ME, Frejo MT (1993) Ethylene glycol action on neurons and its cholinomimetic effects. J Environ Pathol Toxicol Oncol 12: 155-159.
  • Ferrer A (2003) Intoxicaciones por metales. An Sist Sanit Navar 26 suppl 1: 141-153.
  • Fischer AB (1976) Heavy metal toxicity in mammalian cell cultures. Zentralbl Bakteriol 162: 77-84.
  • Jarup L (2003) Hazards of heavy metal contamination. Br Med Bull: 167-182.
  • Lauwerys RR (2003) Toxicologie industrielle et intoxications professionnelles. Masson: 4a ed. París.
  • Magos L, Clarkson TW (2006) Overview of the clinical toxicity of mercury. Ann Clin Biochem 43: 257-268.
  • Miura K, Himeno S, Koide N, Imura N (2000) Effects of methylmercury and inorganic mercury on the growth of nerve fibers in cultured chick dorsal root ganglia. Tohoku J Exp Med 192: 195-210.
  • Morken TS, Sonnewald U, Aschner M, Syversen T (2005). Effects of methylmercury on primary brain cells in mono- and co-culture. Toxicol Sci 87: 169-75.
  • Park ST, Lim KT, Chung YT, Kim SU (1996) Methylmercury-induced neurotoxicity in cerebral neuron culture is blocked by antioxidants and NMDA receptor antagonists. Neurotoxicology 17: 37-45.
  • Pettmann B, Delaunoy JP, Courageot J, Devilliers G, Sensenbrenner M (1980) Rat brain glial cells in culture: effects of brain extracts on the development of oligodendroglia-like cells. Dev Biol 75: 278-287.
  • Pinedo I, Anadón MJ, Capó MA, De Guevara J (1999) Estudio in vitro del efecto neurotoxicológico del cadmio. Rev Toxicol 16: 184.
  • Sakaue M, Takanaga H, Adachi T, Hara S, Kunimoto M (2003) Selective disappearance of an axonal protein, 440-kda ankyrinb, associated with neuronal degeneration induced by methylmercury. J Neurosci Res 73: 831-839.
  • Sanfeliu C, Sebastia J, Ki SU (2001) Methylmercury neurotoxicity in cultures of human neurons, astrocytes, neuroblastoma cells. Neurotoxicology 22: 317-327.
  • Sarafian TA, Cheung MK, Verity MA (1984) In vitro methyl mercury inhibition of protein synthesis in neonatal cerebellar perikarya. Neuropathol Appl Neurobiol 10: 85-100.
  • Toimela T, Tahti H (2004) Mitochondrial viability and apoptosis induced by aluminum, mercuric mercury and methylmercury in cell lines of neural origin. Arch Toxicol 78: 565-574.
  • Toimela T, Tahti, H (2004) Mitochondrial viability and apoptosis induced by aluminum, mercuric mercury and methylmercury in cell lines of neural origin. Arch Toxicol 78: 565-574.
  • Turner RA (1965) Screening methods in pharmacology. Academic Press, inc. Ltd. Londres.
  • Wang XF, Cynader MS (2001) Pyruvate released by astrocytes protects neurons from copper-catalyzed cysteine neurotoxicity. J Neurosci 21: 3322-3331.
  • Waymouth C (1970) Osmolarity of mammalian blood and media for culture of mammalian cells. In vitro 6: 109-127.